红豆树的组织培养技术研究_带牙茎段

论文导读:：红豆树(OrmosiahosieietWils)别名鄂西红豆、花梨木、花榈木。取红豆树半木质化嫩枝带牙茎段。开展优良单株的选择和组织培养等无性繁育技术育苗。
论文关键词：红豆树，带牙茎段，组织培养
 

红豆树(Ormosia hosiei et Wils )别名鄂西红豆、花梨木、花榈木，蝶形花科红豆树属常绿或半落叶乔木，为我国特有树种，国家Ⅱ级保护珍稀濒危植物^[1]，自然分布于福建、浙江、江西、江苏、湖北、湖南、陕西、四川、贵州等省，多生于海拔400-650m的丘陵、河边或山谷常绿阔叶林中^[2]。红豆树以其鲜红艳丽的种子、优质的木材著称于世，具有极高的材用、景观和森林文化价值。木材光滑坚硬，纹理美丽，不经油漆却形同墨玉，因而与红木齐名，是我国最珍贵乡土用材之一，目前市场价达2万元/m³以上；其树冠浓荫覆地，树姿优雅清秀，枝叶翠绿发亮，是优良的庭院绿化树种。但现存红豆树天然资源稀少，结实年龄很迟且不稳定，一般在35a左右才开花结实，结果盛期在50 a以后带牙茎段，而且通常需间隔3-5年开花结果一次，极少连年开花结果，种子传播扩散和自然繁衍能力差，种子来源少，种苗紧缺，制约了红豆树的规模发展^[3-5]。20世纪70-80年代，福建省建瓯水西、邵武卫闽、三明辛口等多个国有林场先后开展了小规模营造红豆树人工片林，但因使用种子苗造林，其林木个体间在树高、胸径、枝下高、通直度及心材率等分化与变异程度大，严重影响红豆树人工林高效栽培，开展优良单株的选择和组织培养等无性繁育技术育苗，规模化生产优质苗木，对高效保育珍稀濒危红豆树资源具有重要的理论意义与实际

应用价值。蝶形花科树种已见檀属的海南降香黄檀的离体培养和植株再生(朱靖杰，

2005)，有关红豆树的组织培养技术尚未见报道，仅见姚军等(2007)对同科、同属的

花榈木，采用种子无菌萌发获得的带叶茎段，进行组织培养和快速繁殖研究的报道。

因此，我们对其进行了组织培养技术研究，以期探索出一条通过组织培养的方法大量繁殖红豆树苗木，满足市场需求免费论文网。

1 材料与方法

1.1 外植体来源

供试材料为3a生红豆树优树根蘖苗经移栽促萌长出的萌条，取其带芽茎段先经清水冲洗（嫩枝0.5h，老枝1h）后，在超净工作台上用75%的酒精浸泡30s后，再用0.1%升汞浓液浸泡8-10min，最后用无菌水冲洗4-5次。

1.2 外植体取材方式

外植体取材采用三种不同方式，分别取茎的顶端、中段和下段，要求带芽的茎段。

1.3 外植体处理方法

将外植体萌芽条切成1-2cm的小段，保留1-2个小芽，竖直插入诱导培养基中。萌芽后转接增殖培养基。

1.4 培养条件及培养基

本试验培养温度为26±2℃，光照时间为12h/d，光强为2000-3000LX，湿度为60-70%。诱导和芽增值培养均以MS全价培养基为基础，外植体诱导培养基采用 MS+BA0.5mg/L+ NAA0.05 mg/L；增殖培养采用附加不同浓度的BA、NAA，以找出增殖效果最佳的配方，使用的增殖培养基种类如下： (1)MS+BA0.5mg/L+ NAA0.1mg/L； （2)MS+BA1.5mg/L+ NAA0.1 mg/L；(3)MS+BA2.0mg/L+NAA0.1 mg/L；（4)MS+BA4.0mg/L+ NAA0.1mg/L；(5)MS+BA0.5mg/L+ NAA0.2 mg/L；(6)MS+BA1.5mg/L+NAA0.2 mg/L；(7)MS+BA2.0mg/L+ NAA0.2 mg/L；(8)MS+BA4.0mg/L+ NAA0.2 mg/L；上述各培养基加入3％蔗糖和0.6％琼脂带牙茎段，调pH为5.8。

1.5 培养过程

外植体接种后，统计接种瓶数，培养7天后及时观察、记载,淘汰污染的培养瓶数,待萌芽长致2-3cm时,及时转接到增殖培养基上,观察增殖倍数。

2. 结果与分析

2.1 不同外植体取材方式萌芽情况比较

外植体取半木质化嫩枝的带芽茎段（茎顶端、中段和下段）及木质化老枝的带芽茎段（茎顶端、中段和下段）等不同方式，切成1-2cm的小段，经消毒后接入诱导培养基中，其萌发情况见表1。

表1 红豆树不同外植体接种方式的萌芽情况比较

注：表中的萌发率是淘汰已污染的培养瓶数后，已萌发接种瓶数与未污染瓶数之比。

由表1可知：取材红豆树嫩枝的茎顶端，其污染率最低，为31.43%,萌发率最高为58.33%,萌发时间最短,生长最好；取材老枝的茎下段污染率最高，为89.62%，萌发率最低为9.09%，萌芽最迟，生长极差。

2.2．BA和NAA不同浓度组合对红豆树茎芽萌发及增殖的影响

取红豆树半木质化嫩枝带牙茎段，用8种不同的增殖培养基进行萌芽和增殖试验。

表2结果显示：BA与NAA配合使用时，以序号（3）的培养基,浓度为BA2.0mg/L+ NAA0.1 mg/L，萌芽最快，萌芽率最高为53.1%,新生芽数最多，长势好，增殖倍数最大，达到5倍以上(见图1）。而序号（1）的培养基激素配比和浓度为BA0.5mg/L+ NAA0.1 mg/L，萌芽慢，萌芽率为19.35%，新芽少，长势差，无增殖(见图2）。序号（2）的培养基激素配比和浓度为BA1.5mg/L+ NAA0.1 mg/L，萌芽的长势仅次（3）培养基，增殖倍数为3倍(见图3 )。浓度较高的NAA对芽的后期生长不利，如:序号（5）~（7）的培养基, NAA浓度均为0.2 mg/L，而BA浓度分别为0.5mg/L、1.5mg/L和2.0mg/L，都表现为芽生长不整齐(见图4，a,b,c）免费论文网。从表中还可见高浓度的BA也会抑制芽的生长,如序号（4）和（8）培养基, BA浓度都为4.0mg/L，而NAA浓度分别为0.1mg/L和0.2mg/L，芽都不生长(见图5）。

表2 BA和NAA不同浓度组合对红豆树茎芽萌发及增殖的影响

2.3 芽的分化与增殖

切取诱导培养生长至高约2cm的小芽带牙茎段，接种到培养基(1)中继续培养，13d后，芽基部膨大，单芽基部愈伤组织分化不明显，芽萌发迟，芽不生长。在培养基（2）、（5）~（7）中,单芽基部愈伤组织分化明显，21d后从愈伤组织中分化出许多绿色芽点，但只有部分不断抽出伸长，芽生长不整齐。而培养基(3)中，2ld后不定芽基部产生愈伤组织的同时，腋芽大量分化、伸长，28d后达到最大，芽萌发快，且整齐。在培养基（4）和（8）中，则表现为萌芽受到抑制，芽不生长。

3 小结与建议

3.1 红豆树外植体取嫩枝的萌芽率平均为52.05%，老枝萌芽率平均为12.2%。因此，组培外植体的取材部位，以取半木质化嫩枝顶端带牙茎段为好。

3.2 增殖培养试验可知，增殖培养基以序号（3）,浓度为BA2.0mg/L+ NAA0.1mg/L，增殖效果最为理想。

3.3 红豆树的生根培养基、移苗种植及后期苗圃的管理还有待进一步的研究和完善。

参考文献
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[3]章浩白，吴厚扬，林文芳，等．福建森林[M]．北京：中国林业出版社，1993．
[4]何汇珍．福建植物志第三卷[M]．福州：福建科学技术出版社，1987．
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[6]姚军，李洪林，杨波.花榈木的组织培养和快速繁殖[J].植物生理学通讯，2007，43(1)：123-124
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[8]冯建国，季新良，周志春，等．2007．特种经济高档用材红豆树培育技术．林业科技开发，2l(5)：41-43．
（图1）img width=220 height=166 src='/d/file/picture/201204/23/48.files/image002.jpg'>(图2)br>